研究报告/Research Report

三叶木通果实成熟过程内参基因筛选  

杨航1 , 刘红昌2 , 石小兵1 , 葛菲1 , 赵致2 , 罗辉3
1 贵州大学生命科学学院, 贵阳, 550025
2 贵州省药用植物繁育与种植重点实验室, 贵阳, 550025
3 贵州省林业厅推广总站, 贵阳, 550001
作者    通讯作者
植物药与药理学杂志, 2016 年, 第 5 卷, 第 5 篇   
收稿日期: 2016年05月04日    接受日期: 2016年05月15日    发表日期: 2016年05月25日
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本文首次发表在 《基因组学与应用生物学》第35卷第5期1-7页上。现依据版权所有人授权的许可协议,采用 Creative Commons Attribution License,协议对其进行授权,再次发表与传播。只要对原作有恰当的引用, 版权所有人允许并同意第三方无条件的使用与传播。
推荐引用:
引用格式(中文):
杨航等, 2016, 三叶木通果实成熟过程内参基因筛选, 基因组学与应用生物学, 35 (5): 1206-1212 (doi: 10.13417/j.gab.035.001206 )
引用格式(英文):
Yang et al., 2016, Selection of Reference Genes during Berry Development in Akebia trifoliate(Thunb.) Koidz, Genomics and Applied Biology, 35(5): 1206-1212 (doi: 10.13417/j.gab.035.001206 )
 
摘要

为了筛选三叶木通果实成熟过程中最稳定的内参基因,本试验从三叶木通果实转录组数据中搜索出22条候选内参基因,用geNorm、Normfinder三个软件进行分析,分析结果显示RG19 (histone h3)与RG5 (EF-α)配合使用作为内参基因最稳定。本试验首次提供了在三叶木通果实成熟过程中比较理想的两条内参基因,通过两条内参基因的配合使用,可作为三叶木通果实成熟过程荧光定量试验的稳定参考。

关键词
三叶木通; 果实;内参基因

三叶木通(Akebia trifoliate (Thunb.) Koidz)为木通科木通属木质藤本植物,原产于中国和日本,在我国主要分布于贵州、湖南、湖北、陕西和江西等地区(马玉华和王荔, 2011)。中药预知子为其干燥近成熟果实(国家药典委员会, 2015)。近年来,针对三叶木通的研究主要集中在对其化学成分、生态学、药理作用、扦插栽培以及指纹图谱等方面(吴永朋等, 2013)。文献报道,α-常春藤皂苷是其主要指标性成分和活性成分(侯雄军等, 2012),其中的有效成分对癌细胞。

 

理想的内参基因应该是在不同处理、不同组织,甚至不同物种之间的表达量相同,但实际实验中这样的内参基因是不存在的(袁伟等, 2012)。任何一种内参基因的稳定表达都是相对的,在一定类型的细胞或实验因素作用下稳定表达的某内参基因在其他类型的细胞中或实验因素作用下可能是变化的(阙友雄等, 2009)。因此筛选特定物种在特定处理中稳定表达的内参基因是进行荧光定量试验的前提。

 

1结果与分析

1.1 RNA 检测

用1%琼脂糖凝胶电泳对所获得RNA 进行完整性验证,18S 与28S 电泳条带亮而5S条带暗,说明RNA 未降解,完整性良好(图1)。并利用Thermo Scientific酶标仪对RNA 进行浓度检测(表1)。

 

 

图 1 RNA电泳分析

 

 

 

表 1 RNA 样品的提取浓度

 

 

1.2初步评价

geNorm评价结果显示,在22 条候选内参基因中逐一删除M 值最大的基因,最终剩余的10 条候选内参基因分别为:RG3、RG5、RG7、RG9、RG12、RG14、RG15、RG17、RG19 和RG21 (表2)。Normfinder评价结果显示,在22 条候选内参基因中最稳定的前10 条基因分别是RG15、RG21、RG7、RG12、RG19、RG4、RG17、RG3、RG5 和RG9 (表3)。其中9条候选内参基因(RG3, RG5, RG7, RG9, RG12, RG15,RG17, RG19, RG21)在两种软件的评价结果中均显示较稳定。

 

 

表 2 geNorm 初次评价及排名

 

 

表 3 Normfinder初次评价

 

1.3二次评价

受对初次评价筛选出的9 条候选内参基因利用geNorm、Normfinder 和BestKeeper 三个软进行二次评价(表4)。geNorm 软件评价显示在9 条候选内参基因中RG19 表达最稳定,RG17 表达最不稳定。按照M 值由小到大排序为:RG19

 

 

表 4 候选内参基因二次评价

 

BestKeeper 软件评价也显示9 条候选内参基因中RG19 表达最稳定,RG17 表达最不稳定。根据SD值由小到大排序为:RG19(

 

 

图 2 geNorm分析候选内参基因稳定性

 

 

 

图 3 geNorm分析候选内参基因配对变异系数

 

 

1.4内参基因标准曲线及溶解曲线

无软件分析显示RG5 (EF-α)与RG19 (histone h3)配合使用作为内参基因最稳定。故对两条内参基因进行标准曲线验证,由仪器自带软件构建标准曲线(表5)。由荧光定量仪器自带软件生成RG5 (EF-α)与RG19 (histone h3)两条内参基因的溶解曲线,并计算出Tm 值分别为79.6℃ (图4)和83.2℃ (图5),二者均表现出明显的单峰,说明两条基因特异性较好。

 

 

图 4 内参基因RG5 (EF-α)溶解曲线

 

 

 

表 5 实时荧光定量PCR中2条内参基因标准曲线参数

 

 

 

图 5 实图5内参基因RG19 (histone h3)溶解曲线

 

2讨论

使用本试验以野生三叶木通6个不同发育时期的果实作为样品,基于果实转录组数据获得候选内参基因的序列进行引物设计及实时荧光定量PCR 试验,用geNorm、Normfinder 和BestKeeper 三个软件对各候选内参基因稳定性进行分析。结果显示geNorm、Normfinder 和BestKeeper 三个软件评价结果基本一致,均认为本试验中的RG19 (histone h3)为各候选内参基因中最稳定的内参基因。geNorm软件默认为M值小于1.5的基因是稳定表达的基因,M 值越小表明基因表达越稳定。本试验中9条候选内参基因M值均小于0.3,其中RG19(histone h3)基因的M 值仅为0.22。在Bestkeeper 软件评价中,SD 值小于1 的内参基因被认为是稳定表达的基因,SD越小表明该基因越稳定(肖翠等, 2012)。本试验中的9 条候选内参基因SD 值均小于0.4,其中RG19 (histone h3)基因的SD 值仅为0.20。由上述软件评价可知,本试验中的9 条候选内参基因的稳定性均已达到作为内参基因的标准,其中筛选出的最优选择则更能满足荧光定量试验中对内参基因稳定性的要求。

 

geNorm 软件通过候选内参基因标准化因子(normalization factor)的配对差异(pairwise variation)分析(Vn/n+1)来判定所需内参基因的最适数目。默认值为Vn/n+1=0.15。若Vn/n+1<0.15 说明以n 个基因作为内参基因组合已经足够稳定,不需要引入第n+1条基因(符伟等, 2012)。本试验中n=2 时的Vn/n+1=0.060,明显小于默认值0.15,因此可以认为取2 条基因作为内参基因的稳定性已经非常可信,不需要引入第3条内参基因。

 

综上所述,本试验获得了三叶木通果实成熟过程中表达稳定的内参基因,并进行了标准曲线和溶解曲线验证。最终证实,以RG19 (histone h3)与RG5(EF-α)两条基因配合,可作为三叶木通果实成熟过程中的内参基因使用。本试验结果可为三叶木通果实成熟过程中的基因表达分析提供参考。

 

3材料与方法

3.1内参基因标准曲线及溶解曲线

无试验材料为野生三叶木通果实,取自贵州省贵阳市花溪区花溪乡麦乃寨,经贵州大学生命科学学院赵财副教授鉴定为木通科木通属三叶木通(Akebia trifoliate (Thunb.) Koidz)。采样时间为自2014 年4 月起每隔一个月采样一次,共采集6个时期的果实样品。果实采下后立即用液氮速冻,后转存于-80℃超低温冰箱中保存。

 

3.2 RNA 提取及浓度检测

无果实样品在冷冻的研钵中磨细,按照Plant RNAKit (200) R6827-02 (OMEGA 公司)试剂盒说明提取RNA,用1%琼脂糖凝胶电泳对所获得RNA 进行完整性验证,利用Thermo Scientific 酶标仪对RNA进行浓度检测。用DEPC水将所有RNA 稀释至相同浓度用于下游实验(Remans et al., 2008)。

 

3.3 cDNA 合成

无按照反转录试剂盒PrimerScriptTM RT ReagentKit Perfect Real time (TaKaRa 公司)说明进行反转录。获得的cDNA 置于-20℃保存备用。

 

3.4候选内参基因筛选及引物设计

根据文献,共筛出18s RNA、actin、CYP、Cyt b、EF-α、elf、F-BOX、GAPDH、Histone h3、PP2A、rpl、SAND、EF、UBQ、APR、GBP、TUA 与TUB 共17 种类型的内参基因(Reid et al., 2006; Remans et al., 2008; 阙友雄等, 2009; 杨爱馥等, 2010; 袁伟等, 2012; 岳秀利等, 2013; 裴徐梨等, 2014; 张玉芳等, 2014)。从三叶木通果实转录组数据中搜索出以上17类内参基因共207 条,对转录组中的表达量数据进行分析,筛选出结果较稳定的基因22 条作为候选内参基因。用在线引物设计软件(http://www. idtdna.com/primerquest/Home/Index)对22 条候选内参基因进行引物设计,引物序列(表6)送至英俊生物公司进行合成

 

 

表 6 候选内参基因引物序列

 

 

3.5实时荧光定量PCR

无以cDNA 为模板,对22 条候选内参基因进行荧光定量PCR。试验体系为20 L:10 μL 荧光染料SYBR Premix Ex TaqⅡ(Takara 公司, SYBR ® PremixEx TaqTMⅡTli RNaseH Plus),10 mol/L的上下游引物各1 μL,cDNA模版1 μL,7 μL超纯水。反应在qTOWER 2.2实时荧光定量PCR 仪中(analytikjena公司)进行。试验条件采用两步法:95℃预变性3 min,95℃变性10 s,60℃退火与延伸30 s,进行35个循环,60~95℃每0.6℃进行1 次荧光监测测定熔解曲线。每个样品设三个重复。

 

3.6数据分析

无由qTOWER 2.2实时荧光定量PCR 仪自带的软件计算三个重复的Ct 平均值为该基因在该样品中的Ct 值。用geNorm、Normfinder和BestKeeper三个软件对各候选内参基因稳定性进行分析。geNorm软件根据相对定量数据q值计算出每个候选内参基因的稳定性值(M value),然后计算某一内参基因与其他内参基因的配对变异系数(Vn/n+1)从而判定所需内参基因的最适数目。Normfinder 软件同样根据相对定量数据q值进行分析,结合组内方差与组间方差,计算出稳定值(stability value),根据稳定值的大小对内参基因的稳定性进行评价(周良云等, 2014)。BestKeeper软件直接对Ct 值进行分析,主要以标准变异系数(SD)和变异相关系数(CV)来判断内参基因的稳定性(侯维海等, 2011)。由于BestKeeper 软件一次最多只能同时对10条内参基因进行评价。

 

因此本试验先用geNorm 和Normfinder 两软件对22条候选内参基因进行初步评价,筛选出两软件均认为最为稳定的前10 条候选内参基因,再使用geNorm、Normfinder 和BestKeeper 三软进行二次评价。

 

3.7内参基因标准曲线

评价出最稳定的内参基因进行标准曲线的验证。采用上述荧光定量PCR 体系及条件,将样品cDNA 按5 倍梯度稀释(共5个稀释浓度),每个浓度设3个重复,仪器自带软件构建标准曲线。

 

使用本试验以野生三叶木通6 个不同发育时期的果实作为样品,基于果实转录组数据获得候选内参基因的序列进行引物设计及实时荧光定量PCR 试验,用geNorm、Normfinder 和BestKeeper 三个软件对各候选内参基因稳定性进行分析。结果显示geNorm、Normfinder 和BestKeeper三个软件评价结果基本一致,均认为本试验中的RG19 (histone h3)为各候选内参基因中最稳定的内参基因。geNorm 软件默认为M值小于1.5的基因是稳定表达的基因,M 值越小表明基因表达越稳定。

 

作者贡献

杨航是本研究的实验设计和实验研究的执行人,并完成数据分析及论文初稿写作;刘红昌和罗辉参与实验设计、实验结果分析;葛菲和石小兵参与试验材料收集与管理;赵致是项目的构思者及负责人,指导实验设计,数据分析,论文写作与修改。全体作者都阅读并同意最终的文本。

 

致谢

诚挚本研究由贵州省中药现代化科技产业研究开发专项项目《木通仿生栽培研究与应用示范》(黔科合SY 字[2014] 3034-1 号)、贵州省林业厅青年人才基金项目(黔林科合J 字[2014] 08 号)和贵州省药用植物繁育与种植人才基地(黔人领发(2013) 15 号)共同资助。

 

参考文献

Bala Chinese Pharmacopoeia Commission, 2015, PRC codex, ChinaMedical Science Press, Beijing, China, pp.297 (国家药典委员会, 2015, 中华人民共和国药典, 中国医药科技出版社,中国, 北京, pp.297)

 

Fu W., Xie W., Zhang Z., Wu Q.J., Wang S.L., and Zhang Y.J., 2012, Selection of valid reference genes for gene expressionstudies by quantitative real-time PCR in Plutellaxylostella (Lepidoptera: Plutellidae) after exposure to Bt toxin,Kunchong Xuebao (Acta Entomologica Sinica), 55(12):1406-1412 (符伟, 谢文, 张卓, 吴青君, 王少丽, 张友军,2012, Bt 毒素诱导下小菜蛾实时定量PCR 内参基因的筛选, 昆虫学报, 55(12): 1406-1412)

 

Hou W.H., Sun P., Chen Q.J., and Li X.E., 2011, Selection of the reference genes for gene expression studies in Rehmanniaglutinosa by real-time quantitative PCR, Zhongguo NongxueTongbao (Chinese Agricultural Science Bulletin), 27(17):76-82 (侯维海, 孙鹏, 陈全家, 李先恩, 2011, 地黄实时定量PCR 内参基因的筛选, 中国农学通报, 27(17): 76-82)

 

Hou X.J., Liu Y.T., Zhang W.G., Li Z.F., Yang S.L., and Feng Y.L., 2012, Extraction process of saponins PD in Fructus akebiae, Zhongyao Xinyao yu Linchuang Yaoli (Traditional Chinese Drug Research and Clinical Pharmacology), 23(2): 204-207 (侯雄军, 刘岩庭, 张武岗, 李志峰, 杨世林, 冯育林, 2012, 预知子中α- 常春藤皂苷提取工艺研究, 中药新药与临床药理, 23(2): 204-207)

 

Ma Y.H., and Wang L., 2011, Research advances in characteristics of Akebia trifoliate, Jiangxi Nongye Xuebao (Acta Agriculturae Jiangxi), 23(5): 71-73 (马玉华, 王荔, 2011, 三叶木通特性研究进展, 江西农业学报, 23(5): 71-73)

 

Pei X.L., Jing Z.G., Tang Z. Chen Z.W., Wang Z., Luo T.K., and Zhang X.L., 2014, Cloning and expression analysis of a pollen coat protein gene from Broccoli, Jiyinzuxue Yu Yingyong Shengwuxue (Genomics and Applied Biology), 33(5): 1046-1052 (裴徐梨, 荆赞革, 唐征, 陈忠文, 王镇,罗天宽, 张小玲, 2014, 青花菜花粉外壁蛋白基因的克隆与表达特征分析, 基因组学与应用生物学, 33 (5):1046-1052)

 

Que Y.X., Xu L.P., Xu J.S., Zhang J.S., Zhang M.Q., and Chen R.K., 2009, Selection of control genes in real-time qPCR analysis of gene expression in sugarcane, Redai Zuowu Xuebao (Chinese Journal of Tropical Crops), 30(3): 274-278 (阙友雄, 许莉萍, 徐景升, 张积森, 张木清, 陈如凯, 2009,甘蔗基因表达定量PCR 分析中内参基因的选择, 热带作物学报, 30(3): 274-278)

 

Reid K.E., Olsson N., Schlosser J., Peng F., and Lund S.T., 2006, An optimized grapevine RNA isolation procedure and statisticaldetermination of reference genes for real-time RT-PCR during berry development, BMC Plant Biology, 6(27): 1211

 

Remans T., Smeets K., Opdenakker K., Mathijsen D., Van gronsveld J., and Cuypers A., 2008, Normalisation of real-time RT-PCR gene expression Measurements in Arabidopsis thaliana exposed to increased metal concentrations, Planta, 227: 1343-1349

 

Ren H.Y., Fang Z.Q., and Liang C., Research of akebia fruit seeds and akebia fruit inhibiting liver cancer cells malignant proliferation, Zhonghua Zhongyiyao Xuekan (Chinese Archives of Traditional Chinese Medicine), 32(6): 1310-1312(任红艳, 方肇勤, 梁超, 2014, 预知子籽及预知子抑制肝癌细胞恶性增殖的研究, 中华中医药学刊, 32 (6): 1310-1312)

 

Wu Y.P., Yuan Y.L., and Xiao Y.P., 2013, The research advancement review of Akebia trifoliate (Thunb.) Koidz, ShanxiLinye Keji (Shaanxi Forest Science and Technologe),(1): 31-34 (吴永朋, 原雅玲, 肖娅萍, 2013, 三叶木通的研究进展, 陕西林业科技, (1): 31-34)

 

Xiao C., Yan J.W., Long G.Y., Dai S.M., Li D.Z., and DengZ.N., 2012, Stability evaluation of reference genes in citrus,Guoshu Xuebao (Journal of Fruit Science), 29(6): 978-984(肖翠, 严佳文, 龙桂友, 戴素明, 李大志, 邓子牛, 2012, 柑橘内参基因的稳定性评价, 果树学报, 29(6): 978-984)

 

Yang A.F., Zhou Z.C., Dong Y., Jiang B., Wang X.Y., Chen Z.,Guan X.Y., Wang B., and Sun D.P., 2010, Stability comparison of cytb and 茁-actin genes expression in sea cucumber (Apostichopus japonicus), Zhongguo Nongye Keji Daobao (Journal of Agricultural Science and Technology), 12 (1):79-84 (杨爱馥, 周遵春, 董颖, 姜北, 汪笑宇, 陈仲, 关晓燕, 王摆, 孙大鹏, 2010, 仿刺参cyt b 和茁-actin 基因表达稳定性比较, 中国农业科技导报, 12(1): 79-84)

 

Yuan W., Wan H.J., and Yang Y.J., 2012, Characterization and selection of reference genes for real-time quantitative RT-PCR of plants, Zhiwu Xuebao (Chinese Bulletin of Botany),47(4): 427-436 (袁伟, 万红建, 杨悦俭, 2012, 植物实时荧光定量PCR 内参基因的特点及选择, 植物学报, 47(4): 427-436)

 

Yue X.L., Gao X.J., Wang J.J., Lv J.J., and Shen H.M., 2013, Selection of reference genes and study of the expression levels of detoxifying enzymes of Tetranychus urticae (Acari: Tetranychidae),Zhongguo Nongye Kexue (Scientia AgriculturaSinica), 46(21): 4542-4549 (岳秀利, 高新菊, 王进军,吕娟娟, 沈慧敏, 2013, 二斑叶螨内参基因的筛选及解毒酶基因的表达水平, 中国农业科学, 46(21): 4542-4549)

 

Zhang Y.F., Zhao L.J., and Zeng Y.L., 2014, Selection and application of reference genes for gene expression studies, Zhiwu Shengli Xuebao (Plant Physiology Journal), 50(8): 1119-1125 (张玉芳, 赵丽娟, 曾幼玲, 2014, 基因表达研究中内参基因的选择与应用, 植物生理学报, 50 (8):1119-1125)

 

Zhou L.Y., Mo G., Wang S., Tang J.F., Yue H., Huang L.Q.,Shao A.J., and Guo L.P., 2014, Stability analysis of referencegene based on real-time PCR in Artemisia annua under cadmium treatment, Zhongguo Zhongyao Zazhi (China Journal Chinese Materia Medica), 39(5): 777-784 (周良云, 莫歌, 王升, 唐金富, 岳红, 黄璐琦, 邵爱娟, 郭兰萍, 2014, 基于实时荧光定量PCR 对镉处理下黄花蒿内参基因稳定性的分析, 中国中药杂志, 39(5): 777-784)

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